Punica granatum L.

Em coelhos suplementados com os extratos vegetais, com posterior análise do sêmen (número, motilidade, viabilidade e atividade metabólica dos espermatozoides), índice gonadossomático (IGS), níveis de ALP, LDH, GGT, MDA, SOD, GST e GPx, parâmetros histopatológicos dos testículos e parâmetros comportamentais.

Em cultura de macrófagos (RAW 264.7) estimulados por LPS e incubados com a fração vegetal, com posterior análise dos níveis TNF-α, IL-1β, IL-6 e IL-10 (RT-qPCR) e óxido nítrico (reagente de Griess).

Em camundongos Swiss portadores de lesão pulmonar aguda induzida por lipopolissacarídeo (LPS), pré-tratados com a fração vegetal, com posterior análise dos níveis de leucócitos, TNF-α, IL10 e albumina no fluido de lavagem broncoalveolar, expressão de TNF-α, IL-1β, IL-6 e IL-10 (RT-qPCR) e parâmetros histológico pulmonares.

Em macrófagos RAW 264.7 estimulados com LPS e incubados com o extrato vegetal, com posterior análise da viabilidade celular (MTT), níveis de NO, PGE2, IL-6, TNF-α e IL-1β (ELISA) e expressão de iNOS, COX2, p38, p65, IkBα, JNK e ERK (Western blotting). 

Em cultura de células de câncer do cólon de humanos (Caco-2), incubadas com o extrato vegetal, com posterior análise de citotoxicidade (MTT), e estimuladas com TNF-α para análise da expressão de CXCL8 (ELISA).

Em tecido colônico suíno estimulado por LPS e incubado com o extrato vegetal, com posterior análise de níveis de CXCL8 (ELISA), expressão de IL-1A, IL-1B, IL-6, IL-10, IL-17A, CXCL8, IFNG, TNF-α e TGFB (RT-PCR).

Em células humanas de miofibroblastos do cólon (CCD-18Co) estimuladas por LPS, incubadas com os extratos vegetais, para determinar expressão de IGF-1R e EGFR.

Em ratos Sprague-Dawley portadores de colite ulcerativa induzida por sulfato de dextrano de sódio, tratados com os extratos vegetais, com posterior análise de parâmetros histológicos, níveis de biomarcadores inflamatórios (PCR, TNF-α, IFN-γ, IL-1β e IL-6 e IL-10) e expressão gênica de mTOR e MAPK.

Em ratos Wistar submetidos a incisão abdominal e aderência intra-abdominal ao lado do ceco, tratados com o óleo vegetal por lavagem peritoneal, com posterior análise de parâmetros macroscópicos, concentração de proteínas e níveis de MDA, NO, GSH, IL-1β, IL-6, TNF-α, TGF-β e VEGF no fluido peritoneal.

Em camundongos Swiss e ratos Wistar tratados com o extrato vegetal e submetidos aos testes de lesão gástrica e analgesia, induzidos por indometacina/etanol e formalina, respectivamente.

Em ratos Wistar portadores de dor neuropática induzida por transecção dos nervos tibial e sural, tratados com o extrato vegetal, submetidos aos testes em pista de caminhada, alodinia ao frio e mecânica dinâmica, hiperalgesia mecânica, ao calor e ao frio, com posterior análise de parâmetros bioquímicos (PT, TBARS, NO, TNF-α e glutationa) em homogenato do nervo ciático e tecidos proximais.

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação dos radicais DPPH e ABTS, e inibitória da enzima 5-lipoxigenase.

Em células de câncer de mama humano (MCF-7) incubadas com o extrato vegetal, com posterior análise de citotoxicidade (método de incorporação de hipoxantina^[3H]).

Em cultura de células de carcinoma de cólon humano (HT-29) incubadas com extrato vegetal, com posterior análise da proliferação celular.

Em ratos Sprague-Dawley portadores de carcinogênese do cólon induzido por azoximetano (AOM), tratados com o extrato vegetal, com posterior análise do número de focos de criptas aberrantes (FCA), proliferação celular (imuno-histoquímica), expressão de genes (RT-PCR) e proteínas (Western blotting) e transfecção com antagomiR de miR-126.

Em ratos Wistar portadores de obesidade induzida por dieta hiperlipídica, tratados com extrato vegetal, com posterior análise do peso corporal, teste de tolerância à glicose, pressão arterial, perfil lipídico, marcadores vasculares (E-selectina, ICAM, VWF e adiponectina) e inflamatórios (leptina, insulina, TNF-α, PAI-1, IL-1α, IL-1β, IL-6 e IL-10) em homogenato do tecido adiposo.

Em camundongos C57BL/6 portadores de lesões hepáticas e neurológicas, induzidas por dieta hipercalórica, tratados com o extrato vegetal, com posterior análise de perfil lipídico hepático e expressão de genes (hepático e hipocampo).

Em coelhos submetidos a administração do suco vegetal, com posterior análise de parâmetros hematológicos, coagulação, anticoagulação, agregação plaquetária e histopatológicos hepáticos.

Em células endoteliais do cérebro humano (HBMEC) e células de mieloma múltiplo (KMS26, MM1S e U266) incubadas com o suco vegetal, com posterior análise da viabilidade celular (ensaio ATPlite 1step e MTT) e ciclo celular (citometria de fluxo); e estimuladas com VEGF-A para avaliar a invasão/migração celular e formação de tubos, e expressão gênica (mRNA e PPARγ).

Em anéis de aorta torácica de coelhos (Nova Zelândia), incorporados em Matrigel (na presença ou não de VEGF-A), incubados com o suco vegetal, com posterior análise da atividade angiogênica.

Em ratos Wistar portadores de artrite induzida por adjuvante completo de Freund (FCA), tratados com a fração vegetal, com posterior análise do escore artrítico, peso corporal, volume da pata, diâmetro articular e parâmetros hematológicos.

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação dos radicais NO, DPPH e O^-₂.

Em leucócitos isolados do sangue de humanos estimulados com LPS, incubados com os extratos vegetais, com posterior análise da viabilidade celular (microscopia), citotoxicidade (MTT), níveis de NO, CXC 1 e 2, IL-6, IL-8, IL-10 e TNF-α (ELISA e qRT-PCR).

Determinar o sinergismo dos extratos, através do gráfico do índice de combinação e análise da curva-dose-efeito; e a citotoxicidade (MTT) em cultura de fibroblastos do pulmão de humanos (WI-38).

Em ratos albinos (MISR) portadores de asma brônquica induzida por ovalbumina, tratados com a combinação dos extratos vegetais (aerossol por inalação), com posterior análise de parâmetros bioquímicos do fluido de lavagem broncoalveolar (nível de mucina) e do homogenato pulmonar (ERO's, TBARS, NO, GSH, GPX e GR), expressão de genes no tecido pulmonar (GPX, SOD, NF-kB, IKK, TNF-α, COX-2, iNOS, IL-13, COL1A1 e MUC5AC) e parâmetros histopatológicos pulmonar.

Em culturas de Staphylococcus aureus, Vibrio cholerae, V. parahaemolyticus, Chromobacterium violaceum e Escherichia coli submetidas ao teste de disco-difusão e microdiluição em ágar, para determinar zona de inibição (mm), as concentrações inibitória mínima (CIM) e bactericida mínima (CBM), tempo de morte, ação bacteriolítica, vazamento da membrana citoplasmática, atividades antiquórum e antibiofilme, e inibição da motilidade bacteriana.

Em culturas de Escherichia coli e Salmonella sp. submetidas ao teste de disco-difusão em ágar para determinar o halo de inibição (mm).

Determinar a formação de compostos sulfurados voláteis e outros odores em amostra de saliva de humanos e parâmetros organolépticos em sedimento salivar.

Em periodontopatógenos humanos, Porphyromonas  gingivalis, Treponema  denticola, Tannerella forsythia e Aggregatibacter actinomycetemcomitans submetidos aos testes de disco-difusão e microdiluição em ágar, para determinar zona de inibição (mm), concentração inibitória mínima (CIM), concentração bactericida mínima e o sinergismos entre os extratos vegetais.

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação do radical DPPH.

Em isolados clínicos de Mycobacteria tuberculosis incubados com o extrato vegetal, associado aos antibióticos rifampicina e isoniazida, submetidos aos testes de sensibilidade e sinergismo (Sistema BACTEC MGIT 960), com posterior análise da concentração inibitória mínima (CIM).

Em culturas de Staphylococcus aureus, Salmonella typhy, Vibro cholera, Escherichia coli e Shigella spp. submetidos ao teste de disco-difusão e microdiluição em ágar, para determinar o halo de inibição (mm) e a concentração inibitória mínima.

Em isolados clínicos de Mycobacterium tuberculosis e Klebsiella pneumoniae, produtoras de β-lactamase, submetidas ao teste de microdiluição em ágar, com posterior análise das concentrações inibitória mínima (CIM) e bactericida mínima (CBM).

Em cultura de Streptococcus mutans submetida aos testes de disco-difusão e microdiluição em ágar, para determinar o halo de inibição (mm) e a concentração bactericida mínima (CBM).

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação do radical DPPH e redução do íon férrico (FRAP).

Em cepas de Staphylococcus aureus, Streptococcus epidermidis e Pseudomonas aeruginosa submetidas aos testes de microdiluição e disco-difusão em ágar, para determinar concentração inibitória (CIM) e a zona de inibição (mm).

Em ratos Wistar portadores de feridas de excisão (2 mm de profundidade) na região dorsal, tratados com a pomada contendo o extrato vegetal (em associação ou não), com posterior analise de parâmetros histopatológicos.

Em culturas de Staphylococcus aureus, Bacillus subtilis, Klebsiella pneumoniae e Escherichia coli submetidas ao teste de disco-difusão em ágar para determinar o halo de inibição (mm).

Em células de câncer de mama humano (MCF-7) incubadas com as nanopartículas contendo o extrato vegetal, com posterior análise de viabilidade (MTT).

Em cultura de Pseudomonas aeruginosa submetida ao teste de disco-difusão em ágar para determinar o halo de inibição (mm).

Em cobaias portadoras de feridas por excisão (2 cm²), tratadas com a membrana contendo o extrato vegetal (500 µL), com posterior análise de cicatrização de ferida.

Determinar a atividade inibitória das enzimas α-glicosidase e α-amilase e antioxidante através da eliminação dos radicais DPPH e ABTS.

Em células de câncer hepático de humano (HepG2) incubadas com extrato vegetal e nanopartículas contendo o extrato vegetal, com posterior análise de citotoxicidade (MTT).

Em cepas de Sthaphylococcus aureus e Escherichia coli submetidas ao teste de disco-difusão em ágar, para determinar o halo de inibição (mm).

Em camundongos NMRI portadores de convulsão induzidas por estricnina e pentilenotetrazol, pré-tratados com extrato vegetal, com posterior análise do tempo latência antes do início da convulsão, duração da convulsão, proteção contra convulsão e taxa de mortalidade.

Em ratas Wistar ovariectomizadas tratadas com extrato vegetal, submetidas aos testes de natação forçada e campo aberto, com posterior análise da ativação de receptores estrogênicos, na presença de substâncias agonistas e antagonistas.

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação dos radicais DPPH e O₂^-, e inibitória das enzimas COX-1 e 2, XO, AChE e MAO-A; e em cultura de cultura de células Hep-2 e Artemia salina estimuladas ou não por peroxido de oxigênio, incubadas com o suco vegetal, com posterior análise da viabilidade celular (MTT).

Em camundongos Balb/c tratados com as frações vegetais, submetidos aos testes de diarreia induzida por óleo rícino, motilidade intestinal (CMC-Na e farinha de carvão) e método de enteropooling, com posterior análise de aspectos das evacuações (início, número e características), movimento de alimento do piloro para o ceco e acúmulo de fluido intraluminal, além de parâmetros histopatológicos.

Em cultura de Paracoccidioides brasiliensis e macrófagos murinos, incubados com o extrato e frações vegetais, para determinar concentração inibitória mínima (CIM) e citotoxicidade.

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação do radical DPPH, da redução do íon férrico (FRAP) e peroxidação lipídica (em homogenato hepático).

Em camundongos Swiss portadores de genotoxicidade induzida por ciclofosfamida, pré-tratados com o extrato vegetal, com posterior análise dos danos ao DNA (teste do micronúcleo em células da medula óssea) e parâmetros bioquímicos (TBARS, CAT, SOD, GST, GSH e proteínas).

Em camundongos Swiss portadores malária induzida por infecção com Plasmodium chabaudi (em hemácias), tratados com extrato vegetal, com posterior análise de parâmetros histológicos (microscopia), apoptose (TUNEL), bioquímicos (CAT, MDA, NO) e expressão de IL-1β, TNF-α e IFN-γ (qPCR) no baço.

Em cultura de patógenos orais, Streptococcus mutans e Candida albicans, submetidas ao teste microdiluição em ágar, para determinar as concentrações inibitória mínima (CIM), bactericida mínima (CBM) e fungicida mínima (CFM), ao teste de disco-difusão em ágar para determinar o halo de inibição (mm) e ao teste de formação de biofilme em microplaca com análise em Microscopia Eletrônica de Varredura.

Em culturas de Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Bacillus subtilis, Staphylococcus aureus e Candida spp. submetidos ao teste de microdiluição em ágar, com posterior análise da concentração inibitória mínima (CIM) e concentração bactericida mínima (CBM).

Em cepas bacterianas de Bacillus subtilis, Staphylococcus aureus, Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Salmonella typhi, Shigella dysentriae e Sacchromyces cerevisiae submetidas aos testes de disco-difusão e microdiluição em ágar, para determinar a zona de inibição (mm) e a concentração inibitória mínima (CIM).

Determinar a atividade antioxidante (radical DPPH, capacidade antioxidante total, peroxidação lipídica e poder redutor) e inibitória da enzima α-glicosidase.

Em cepas de Escherichia coli, Klebsiella pneumonia, Streptomyces diastaticus, Enterococcus faecalis, Enterobacter aerogenes, Staphylococcus epidermidis, Mycobacterium smegmatis, Curvularia lunata, Trichophyton rubrum, T. mentagrophytes, Botrytis cinerea, Aspergilus flavus e A. niger submetidas aos testes de disco-difusão e microdiluição em ágar, com posterior análise de zona de inibição (mm) e concentração inibitória mínima (CIM).

Em cultura de Caenorhabditis elegans incubada com os extratos vegetais, com posterior análise de acúmulo de triglicerídeos, quantificação de lipídeos e tempo de sobrevivência.

Determinar a atividade antioxidante através da redução do íon férrico (FRAP) e da eliminação dos radicais ABTS e DPPH.

Em ratos Wistar submetidos ao teste da formalina (inflamação e nocicepção), tratados com o extrato vegetal e ácido acetilsalicílico (AAS), com posterior análise de interação (análise isobolográfica) e envolvimento da via L-arginina/NO/cGMP.

Em ratos Wistar portadores de obesidade induzida por dieta hipercalórica, tratados com o extrato vegetal, com posterior análise do peso corporal, ingestão de alimentos, parâmetros bioquímicos (TAG, TC, glicose, insulina e leptina) e histológicos, e expressão de genes nos tecidos hepático, estomacal e adiposo branco.

Em cultura de células osteoblásticas isoladas da calvária de ratos neonatos, incubadas com o extrato vegetal, com posterior análise da viabilidade celular (MTT), atividade da fosfatase alcalina (ALP), formação de colágeno (Sirius Red), nível de cálcio (Alizarin Red S), DNA celular (citometria de fluxo) e expressão do gene Runx2 (qPCR).

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação do radical DPPH.

Em ratas Wistar portadoras de hematotoxicidade induzida por cloreto de bário, tratadas com o extrato vegetal, com posterior análise de parâmetros hematológicos e bioquímicos (proteínas, ácido ascórbico, MDA, AOPP, CAT, GPx e GSH) e teste do micronúcleo em medula óssea.

Determinar atividade antioxidante através da eliminação do radical DPPH.

Em ratos Wistar portadores de toxicidade hepática e eritrocitária induzida por fluoreto de sódio (NaF), pré-tratados com o suco vegetal, com posterior análise de parâmetros histopatológicos, bioquímicos plasmáticos (AST, ALT, ALP, LDH, PT, ALB e bilirrubina) e em homogenato de eritrócitos e hepático (MDA, GSH, GPx, SOD, CAT e proteínas).

Determinar a capacidade antioxidante total e a atividade das enzimas SOD, CAT e GPx.

Em cultura de células HepG2 portadoras estresse oxidativo induzido por hidroperóxido de terc-butila (t-BOOH), incubadas com o extrato vegetal, com posterior análise da atividade metabólica (ensaio MTT), integridade da membrana plasmática (ensaio LDH), peroxidação lipídica (TBARS) e expressão de ACTB, GAPDH, HMBS, SDHA, CAT, GPx-1 e 4, SOD-1 e 2 (RT-PCR).

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação dos radicais DPPH e ABTS, capacidade quelante de íons Fe²⁺ e branqueamento com β-caroteno.

Em cultura de células humanas de melanoma amelanótico (C32), adenocarcinoma de células renais (ACHN), carcinoma de próstata hormônio dependente (LNCaP), carcinoma de células grandes do pulmão caucasiano (COR-L23), câncer de mama (MCF-7), melanoma maligno (A375) e adenocarcinoma cervical (HeLa) incubadas com extrato vegetal, com posterior análise de atividade antiproliferativa (ensaio SRB).

Determinar a atividade antioxidante através dos testes: capacidade antioxidante total, eliminação do radical DPPH, redução do íon ferricianeto, peroxidação lipídica, redução de íon cúprico e quelação de íons Fe⁺².

Em cultura de eritrócitos incubados com peróxido de hidrogênio para indução de estresse oxidativo, incubados com os extratos vegetais (associados ou não), com posterior análise da ação antioxidante.

Em culturas de células de câncer humano (MG-63, A-549, HeLa, HepG2 e IMR-32) e células normais (T293), incubadas com os extratos vegetais (associados ou não), com posterior análise de viabilidade celular (resazurina), morfologia celular e nuclear (microscopia confocal), níveis de espécies reativas de oxigênio e potencial mitocondrial (ELISA).

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação do radical DPPH.

Em cultura de células de câncer humano do cólon (HT29 e HCT116), fígado (HepG2 e Huh7), mama (MCF-7 e MDA-MB-231) e próstata (DU145) incubadas com a fração hidrofílica, com posterior análise da proliferação celular (Sulforodamina B), apoptose (anexina V FITC), ciclo celular (iodeto de propídio), níveis de citocinas, quimiocinas e fator de crescimento (ELISA).

Em ratos Wistar portadores câncer hepático induzido por dietilnitrosamina, tratados com os extratos vegetais, com posterior análise de parâmetros bioquímicos sérico e tecidual (SGOT, SGPT, ALP, GGT, MDA, GPx, GSH, SOD, CAT, ácido ascórbico e tocoferol).  

Determinar a atividade antioxidante, inibitória da peroxidação lipídica e da produção de produtos finais de glicação avançada (AGEs), através da eliminação do radical ABTS, método do tiocianato férrico e ensaio com BSA/ribose, respectivamente.

Em neutrófilos polimorfonucleares isolados de ratos Wistar, estimulados com LPS e incubados com o extrato vegetal, com posterior análise de migração leucocitária (câmara de Boyden).

Em cepas de Staphylococcus aureus, S. epidermidis, Pseudomonas aeruginosa e Escherichia coli submetidas ao teste de disco-difusão em ágar, para determinar concentração inibitória (CIM) e a zona de inibição (mm).

Em ratos Wistar portadores de infecção cutânea (dorso) por Staphylococcus aureus e S. epidermidis, tratados topicamente com as formulações contendo os extratos vegetais, com posterior análise do número de unidades formadoras de colônias (UFC) e a identificação bacteriana.

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação do radical DPPH.

Em células mononucleares de sangue periférico de humano (PBMC), incubadas com a nanoenulsão contendo o óleo vegetal, com posterior análise da viabilidade celular (MTT), danos no DNA (ensaio do Cometa), peroxidação lipídica (TBARS), atividade hemolítica, níveis de proteína carbonil e catalase (CAT).

Em cultura de células de glioma de rato (C6) e de astrócitos incubadas com o óleo vegetal, associado ou não a nanoemulsão, para determinar citotoxicidade (MTT).

Em cultura de células humanas de adenocarcinoma de pulmão (H1299) e de carcinoma de colorretal (HCT116) incubadas com os extratos vegetais, com posterior análise da viabilidade celular (cristal violeta), citotoxicidade (MTS) e morte celular (caspase 3).

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação dos radicais DPPH e ABTS.

Em camundongos transgênicos portadores de oncogenes do papilomavírus humanos (HPV), tratados com os extratos vegetais, com posterior análise do peso corporal, consumo de alimentos, parâmetros bioquímicos (creatinina, ureia, ALT e AST), histológicos e estresse oxidativo em homogenato hepático e renal.

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação do radical DPPH.

Em cultura de células de humanos de câncer de mama (MCF-7), de ovário (SKOV3), da próstata (PC-3) e de pulmão (A549) incubadas com o extrato vegetal, com posterior análise de citotoxicidade (MTT).

Em ratas Sprague-Dawley portadores de câncer de mama induzido por DMBA, tratadas com o fitoterápico, com posterior análise da expressão de COX-2, HSP90, IκBα, NF-κB-p65 e Nrf2 (imuno-histoquímica).

Em cultura de células de adenocarcinoma da mama de humanos (MCF-7), incubadas com as nanopartículas contendo o extrato vegetal, com posterior análise de viabilidade celular (ensaio MTT), parâmetros microscópicos (microscopia invertida), densidade nuclear e apoptose (iodeto de propídio), ciclo celular (citometria de fluxo) e degradação do DNA (ensaio Cometa).

Em culturas de células de mieloma múltiplo humano (U266) incubadas com os extratos vegetais, com posterior análise da proliferação celular (MTT), potencial de membrana mitocondrial (ELISA), apoptótica (Anexina-V-FITC/PI) e ciclo celular (citometria de fluxo).

Em cultura de células humanas de rim embrionário (HEK293), de fígado normal (L02) e de câncer de pulmão (A549 e H1299), em células Vero (rim de macaco africano) e de câncer de pulmão Lewis de camundongos (LL/2), incubadas com o extrato vegetal, com posterior análise da viabilidade celular (MTT) e formação de colônias.

Em cultura de células humanas de câncer de pulmão (A549 e H1299) e de câncer de pulmão Lewis de camundongos (LL/2), incubadas com o extrato vegetal, com posterior análise do teste migração e invasão celular (cicatrização de feridas e câmara de Boyden), ciclo celular, apoptose, potencial de membrana mitocondrial, níveis de espécies reativas de oxigênio e expressão de MMP 2 e 9 (Western blotting).

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação dos radicais DPPH e ABTS, inibitória de 5-lipoxigenase (5-LOX), acetilcolinesterase (AChE) e butirilcolinesterase (BuChE).

Em células de câncer de mama (MCF-7) incubadas com o extrato e frações vegetais, com posterior análise de citotoxicidade (MTT).

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação do radical DPPH e redução do íon férrico (FRAP).

Em cultura de células Vero infectadas com vírus HSV-1 e incubadas com os extratos vegetais (pré e pós tratamento), com posterior análise de citotoxicidade, proliferação célula, expressão de genes e proteínas virais (Western blotting e PCR).

Em cultura de Staphylococcus aureus, Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa e Candida albicans submetidas ao teste de microdiluição em ágar para determinar a concentração inibitória mínima (CIM).

Em cultura de fibroblastos renais isolados de macaco verde africano (células Vero), incubados como o extrato vegetal, com posterior análise de viabilidade (ensaio MTS).

Em cultura de células Vero infectadas por ZKV (MR766 e HPF2013), vírus da herpes 2 (HSV-2) e vírus vaccinia (VACV), incubadas com o extrato vegetal (pré e pós-infecção), com posterior análise redução de placa viral.

Em células renais de macacos (Vero E6), caninas (MDCK) e células epiteliais de adenocarcinoma alveolar basal de humanos (A549) infectadas por vírus MVA (teste, envelopado), IAV (influenza A), SARS-COV-2 (coronavírus 2) e ADY5 (adenovírus tipo 5), incubadas com os extratos vegetais, com posterior análise antiviral.

Em coelhas prenhes tratadas com extratos vegetais (associados ou não), com posterior análise de parâmetros bioquímicos (hormônio luteinizante, testosterona e hormônio folículo estimulante).

Em coração isolados de ratos Wistar submetidos a isquemia global e reperfusão (Langendorff), associado ou não com L-NAME (inibe a síntese de NO) com posterior análise de parâmetros hemodinâmicos (FC, CPP, LVDP, RPP e taxa de aumento da pressão ventricular esquerda), parâmetros bioquímicos (Ck-MB, LDH, Tnl, SOD, GPx, CAT e proteínas totais) e tamanho de infarto.

Em culturas de Streptococcus pneumonia, Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa, Klebsiella pneumonia, Escherichia coli, Clostridium perfringens e Bacteroides incubadas com o extrato e fração vegetal contendo ou não o hidrogel, com posterior análise da concentração inibitória mínima (CIM).

Em ratos portadores de feridas dorsais por excisão, tratados com o extrato e fração de acetato de etila, incorporados ou não ao hidrogel, com posterior análise de parâmetros histológicos e imuno-histoquímicos (TGF-β1 e NF-kB).

Em culturas de Staphylococcus aureus, Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa e Klebsiella pneumoniae submetidas ao teste de disco-difusão em ágar, com posterior análise do halo de inibição (mm).

Em ratos Sprague-Dawley portadores de feridas dorsais por excisão, tratados topicamente com o fitoterápico, com posterior análise de parâmetros histológicos.

Em cultura de células PC12 incubadas com o óleo vegetal e metadona, com posterior análise da viabilidade célula (Azul de tripano), citotoxicidade (LDH), proliferação e morte celular (MTT e TUNEL), níveis de óxido nítrico (Griess), de citocinas (IL-1β, IL-6, INF-γ e TNF-α), potencial de membrana mitocondrial (rodamina-123) e atividade da caspase (ensaio colorimétrico).

Em preparações jejunais isoladas de coelhos incubadas com o extrato vegetal, cloreto de potássio, cloreto de bário, atropina (antagonista colinérgico) e loratadina (antagonista da histamina), com posterior análise da contratilidade muscular.

Em ratos Wistar portadores de lesões hepáticas agudas induzidas por paracetamol, pré-tratados com a associação dos extratos vegetais, com posterior análise de parâmetros bioquímicos (SGOT, SGPT, ALP, LDH, MDA, CAT, GSH, SOD, GPx, GR, bilirrubina, hidroperóxido lipídico e proteína), hematológicos (hematócrito, hemoglobina, glóbulos vermelhos e brancos e plaquetas) e histopatológicos, níveis enzimáticos em homogenato hepático (CPR, b5R, GST, DTD, Na⁺/K⁺-ATPase, Ca²⁺-ATPase e Mg²⁺-ATPase).

Em camundongos C57BL/6 portadores de hepatite autoimune induzida por concanavalina A, pré-tratados com o extrato vegetal, com posterior análise de parâmetros bioquímicos (AST e ALT) e histopatológicos, níveis de TNF-α, IFN-γ e IL-6 (ELISA) e de CD4, CD8 e CD69 (citometria de fluxo).

Em ratos Sprague-Dawley portadores de lesões hepáticas induzidas por dietilnitrosamina e fenobarbital, tratados com o extrato vegetal (pré, simultâneo e pós-tratamento), com posterior análise de parâmetros bioquímicos (caspase 3, fragmentação do DNA, MDA, GSH, t-GPx, GSR, GST, SOD, AST e ALT) e histopatológicos hepáticos.

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação do radical DPPH.

Em ratos Sprague-Dawley portadores de lesões hepáticas e renais induzidas por vancomicina, tratados (pré ou simultâneo) com o extrato vegetal, com posterior análise de parâmetros histopatológicos, bioquímicos (creatinina, ácido úrico, ureia, proteínas, globulina, AST, ALP, SOD, CAT, GSH e MDA) e imuno-histoquímicos (BcL-2 e caspase).

Em ratos Wistar portadores de lesões hepatorrenal induzidas por nanopartículas de óxido de cobre (CuO-NPs), tratados com o extrato vegetal, com posterior análise de parâmetros bioquímicos (ALT, AST, BUN, CRE, MDA e GSH), histopatológicos renais e hepáticos e imuno-histoquímicos (caspase-3 e NF-kB), expressão de caspase-3 e Bcl-2 e acúmulo de CuO-NPs nos tecidos.

Em ratos albinos portadores de diabetes induzido por estreptozotocina e nicotinamida, tratados com os extratos vegetais, com posterior análise de parâmetros bioquímicos sérico, renal e hepático (HbA1c, CT, HDL, LDL, TG, AST, ALT, ALP, GSH, MDA, NO, CAT e proteínas) e histopatológicos do pâncreas.

Determinar a atividade inibitória das enzimas α-amilase, lipase e α-glucosidase, e antioxidante através da capacidade redutora (FeCl₃).

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação dos radicais DPPH e ABTS.

Em ratos Wistar portadores de diabetes e hiperlipidemia induzidos por aloxana e dieta hipercalórica, tratados com o extrato vegetal, com posterior análise do peso corporal e parâmetros bioquímicos (LT, TG, CT, HDL, LDL, VLDL, ALT, AST, ALP, ureia, ácido úrico e creatinina).

Em células tronco mesenquimais incubadas com o extrato vegetal, com posterior análise da viabilidade celular (MTT) e expressão de miRNAs (cDNA e bioinformática).

Determinar a atividade inibitória das enzimas α-amilase pancreática (suína) e α-glicosidase intestinal (rato).

Determinar a atividade antioxidante através do poder redutor (FeCl₃) e capacidade de quelação de metais (FeSO₄).

Em ratos Wistar portadores de nefrotoxicidade induzida por cloreto de bário, tratados com o extrato vegetal, com posterior análise de níveis de parâmetros bioquímicos plasmático e renal (ureia, ácido úrico, creatinina, proteínas e metalotioneína, MDA, AOPP, H₂O₂, NPSH, GSH, LDH, CAT, GPx e SOD), expressão de MT-1 e MT-2 (RT-PCR) e parâmetros histopatológicos.

Em células de neuroblastoma humano (SK-N-SH) estimuladas com IL-1β e incubadas com o extrato vegetal, com posterior análise dos níveis de PGE2, COX-2, IkBα, IKKα, BACE-1 e Aβ (ELISA) e viabilidade celular (MTT).

Em ratos transgênicos para a doença e Alzheimer, tratados com o extrato vegetal, com posterior análise dos testes de labirinto aquático de Morris e labirinto em Y, expressão de APP e Aβ (Western blotting), níveis de peptídeos A42 e A40, e enzimas BACE1 e γ-secretase (ELISA).

Em camundongos C57Bl/6 portadores de lesões neurológicas induzidas por peptídeo β-amiloide, tratados com o extrato vegetal, com posterior análise da atividade locomotora e da memória espacial, parâmetros bioquímicos (proteínas totais, BDNF, AChE, TBARS, SOD, TNF-γ, OGT e GPT) e histológicos (quantificação de placas senis).

Em ratos Wistar submetidos à radiação localizada no sistema reprodutor masculino, tratados com o suco vegetal, com posterior análise do peso corporal e dos órgãos (testículos, próstata e epidídimo), parâmetros histopatológicos, bioquímicos (SOD, GSH, MDA e CAT), do esperma (contagem de espermatozoides, morfologia e viabilidade) e níveis de espécies reativas ao oxigênio.

Em ratas Wistar portadoras de aderências peritoneais induzidas por processo cirúrgico, pré-tratadas com o extrato vegetal, com posterior análise de parâmetros macroscópicos e microscópicos.

Em ratas Wistar submetidas à ovariectomia bilateral, tratadas com o extrato vegetal, com posterior análise de parâmetros bioquímicos (FSH, HDL, LDL, TG, CT e estradiol) e histológicos (espessura do córtex tibial e do epitélio vaginal).

Determinar a atividade inibitória da enzima tirosinase isoladas de melanomas B16.