Salvia officinalis L.

Em cultura de Escherichia coli submetida ao teste de fagocitose.

Em ratos Wistar portadores de inflamação aguda (pata traseira) induzida por óleo de terebintina, tratados com a tintura, com posterior análise da contagem total e diferencial de leucócitos e níveis de nitrito/nitrato.

Em culturas da cavidade oral, Staphylococcus aureus, S. epidermidis, Streptococcus mutans, Candida albicans, C. tropicalis e C. glabrata, submetidas ao teste de microdiluição em água, para determinar as concentrações inibitória mínima (CIM), bactericida mínima (CBM) e fungicida mínima (CFM).

Em cultura de macrófagos murinos (RAW 264.7) incubados com o extrato vegetal, com posterior análise de citotoxicidade (MTT) e expressão de citocinas pró-inflamatórias (IL-1β e TNF-α).

Em ratos Wistar tratados com os extratos vegetais, submetidos ao teste da placa quente, de formalina, edema de pata induzido por carragenina, formação de granuloma induzido por esferas de algodão e análise do mecanismo de ação (naloxona, antagonista opioide).

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação dos radicais DPPH e ABTS, capacidade redutora do íon férrico (FRAP) e teste de branqueamento com β-caroteno.

Em macrófagos murinos (RAW 264.7), estimulados com LPS, na presença de células de câncer de mama de humanos (MCF-7 e MDA-MB-231), incubados com os extratos vegetais, com posterior análise da viabilidade celular (MTT), níveis de espécies reativas ao oxigênio (EROs) e óxido nítrico, expressão de NF-kB, IL-1β, IL-6 e TNF-α (imunofluorescência e PCR).

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação do radical ABTS.

Em ratos Wistar portadores de úlcera péptica e diarreia induzidos por etanol e óleo de rícino, pré-tratados com o extrato vegetal, com posterior análise de parâmetros bioquímicos (MDA, H₂O₂, DPPH, SOD, CAT, GPx, GSH, ALP, -SH, Fe, Ca, PCR e proteínas), macroscópicos (mucosa intestinal e gástrica) e histológicos.

Em ratos suplementados com dieta deficiente em zinco e portadores de diabetes induzido por aloxana, tratados com o óleo vegetal, com posterior análise do peso corporal, parâmetros bioquímicos plasmáticos e em homogenato pancreático (glicose, zinco, PCR, TNF-α, IFN-γ, IL-1β, IL-6 e ZNT8) e histopatológicos do pâncreas.

Determinar a atividade das enzimas COMT, MAO-A e AChE.

Em cultura de células epiteliais intestinais primárias e da barreira hematoencefálica de humanos incubadas com o extrato vegetal, na presença ou não de LPS e proteína IL-17A, respectivamente, com posterior análise dos níveis de citocinas (BioMAP Diversity PLUS) e espécies reativas ao oxigênio

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação do radical DPPH, redução do íon férrico (FRAP) e teste de branqueamento com β-caroteno/ácido lineico.

Em camundongos Swiss portadores de dor neuropática periférica induzida por lesão de constrição crônica no nervo ciático esquerdo, tratados com o extrato vegetal, com posterior análise da alodinia (mecânica e frio), teste da placa quente e de caminhada, parâmetros hematológicos, bioquímicos (PCR, AST, ALT, ureia e creatinina) e histopatológicos.

Determinar a atividade angiogênica do extrato vegetal através do ensaio da membrana corioalantoide de embrião de galinha (CAM).

Em culturas de Pseudomonas aeruginosa, Salmonella enterica, Escherichia coli, Staphylococcus aureus e Bacillus subtilis submetidas aos testes de disco-difusão e microdiluição em ágar, para determinar o halo de inibição (mm) e as concentrações inibitória mínima (CIM) e bactericida mínima (CBM).

Em dentes radiculares de humanos infectados com Enterococcus faecalis, incubados com extrato vegetal, com posterior da contagem de unidades formadoras de colônias (UFC) em dentina isolada da parede interna do canal radicular.

Em isolados clínicos de Pseudomonas aeruginosa submetidos ao teste de microdiluição em ágar, para determinar a concentração inibitória mínima (CIM), e análise de parâmetros de virulência (formação e resistência de biofilme, produção de piocianina e motilidade em ágar).

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação dos radicais DPPH e ABTS, e redução do íon férrico (FRAP).

Em culturas de Staphylococcus aureus, Streptococcus pneumoniae, S. pyogenes e S. agalactiae submetidas ao teste de disco-difusão em ágar, com posterior análise do halo de inibição (mm).

Em cultura de fibroblasto dérmico normal de humanos (BJ) incubados com o fitocomplexo, na presença ou não de LPS, com posterior análise da viabilidade celular (ELISA), níveis de proteínas (Ensaio de Bradford) e citocinas pró-inflamatórias IL-6, IL-31, IL-33, TNF-α e STAT3 (ELISA), e expressão de NF-kB (Western blotting).

Em cultura de Streptococcus pyogenes submetida ao teste de microdiluição em ágar, para determinar as concentrações inibitória mínima (CIM) e bactericida mínima (CBM), e a formação de biofilme (MTT e Microscopia Eletrônica de Varredura).

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação do radical DPPH e inibitória da enzima acetilcolinesterase (AChE), e nível de proteína glicada (Ensaio de antiglicação com D-galactose).

Em camundongos Swiss tratados com o extrato vegetal, submetidos ao teste do labirinto em Y, com posterior análise das funções de memória e parâmetros bioquímicos em homogenato cerebral (ácido ascórbico, atividade de AChE, MDA e GSH).

Em camundongos Swiss tratados com os extratos vegetais, com posterior análise dos testes de natação forçada, suspensão da cauda e parâmetros bioquímicos (ALAT, ASAT, ureia e creatinina).

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação do radical ABTS.

Em ratos Wistar portadores de diarreia induzida por óleo de rícino, pré-tratados com o extrato vegetal, associado ou não com loperamida, com posterior análise do trânsito intestinal (teste com carvão), níveis de fluidos gástricos e intestinais, parâmetros bioquímicos plasmáticos (glicose, eletrólitos, ureia, ácido úrico, creatinina, glicose, transaminases, CT, HDL, TG, ALP, PCR) e em homogenato gástrico e intestinal (proteínas, MDA, H₂O₂, SOD, CAT, GPx e -SH).

Em ratas Wistar imaturas ovariectomizadas, tratadas com o extrato vegetal, com posterior análise dos níveis plasmáticos dos hormônios luteinizante (LH) e folículo estimulante (FSH), parâmetros histopatológicos, histomorfométricos e imuno-histoquímicos. 

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação do radical DPPH, H₂O₂, NO e peroxidação lipídica.

Em ratas Wistar portadoras de deficiência de estrogênio induzida por ovariectomia, tratados com os pellets contendo o material vegetal, com posterior análise de parâmetros bioquímicos (AST, ALT, LDH, HDL, LDL, CT, TG, VLDL, LT, 17β-estradiol, glicogênio uterino, MDA, AOPP, SOD, CAT, GPx, GSH e proteínas) e histológicos (útero e fígado).

Em isolados clínicos de Candida albicans submetidos ao teste de disco-difusão e microdiluição em ágar, com posterior análise do halo de inibição e das concentrações inibitória mínima (CIM) e fungicida mínima (CFM), respectivamente, nível de esterol e parâmetros morfológicos (Microscopia Eletrônica de Varredura).

Em culturas de Candida albicans, C. parapsilosis, C. tropicalis, C. guillermondii, C. krusei, Cryptococcus neoformans, Aspergillus niger, A. fumigatus, A. flavus, Epidermophyton floccosum, Trichophyton mentagrophytes, Microsporum canis, M. gypseum, Trichophyton rubrum, T. mentagrophytes var. interdigitalse e T. verrucosum, submetidas ao teste de macrodiluição em ágar, para determinar as concentrações inibitória mínima (CIM) e letal mínima (CLM).

Em cultura de macrófagos (RAW 264.7) incubados com o óleo vegetal, estimulados com LPS, com posterior análise dos níveis de óxido nítrico.

Em cultura de queratinócitos humanos (HaCaT) incubada com o óleo vegetal, com posterior análise de viabilidade celular (MTT).

Em camundongos Swiss submetidos ou não a administração, aguda ou subaguda, de tetracloreto de carbono (CCl₄), tratados com óleo vegetal, com posterior análise de parâmetros mutagênicos em células da medula óssea e em espermatócitos (micronúcleo, apoptose, danos no DNA, aberrações cromossômicas e anormalidades espermáticas) e histológicos (testículos).

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação dos radicais DPPH e ABTS, e capacidade redutora do íon férrico (FRAP).

Em culturas de Staphylococcus aureus, Bacillus subtilis, B. cereus, Proteus vulgaris, P. mirabilis, Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa e Klebsiella pneumoniae submetidas ao teste de disco-difusão em ágar, para determinar o halo de inibição (mm).

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação dos radicais DPPH, ABTS e H2O2 e redução do íon férrico (FRAP).

Determinar a atividade inibitória da atividade das enzimas α-amilase, α-glicosidase, lipase e 5-lipoxigenase.

Em culturas de Listeria monocytogenes, Staphylococcus aureus, Bacillus subtilis, Proteus mirabilis, Escherichia coli e Salmonella typhimurium submetidas aos testes de disco-difusão e microdiluição em ágar, para determinar o halo de inibição e as concentrações inibitória mínima (CIM) e bactericida mínima (CBM).

Em larvas de Drosophila melanogaster incubadas com metanossulfonato de metila, pré ou pós-tratadas com o extrato vegetal, com posterior análise de parâmetros mutagênicos.

Em ratos tratados com o óleo vegetal, associado ou não com mitomicina C (agente mutagênico), com posterior análise de aberrações cromossômicas em células da medula óssea.

Em ratos Wistar tratados com o extrato vegetal, submetidos ao teste de suspensão da cauda, tempo de sono induzido por pentobarbital, teste de dependência à morfina e síndrome de abstinência (naloxona).

Determinar a atividade inibitória das enzimas α-amilase e lipase.

Em ratos Wistar portadores de diabetes induzido por aloxana, tratados com o óleo vegetal, com posterior análise de parâmetros bioquímicos (glicose, atividade das enzimas α-amilase e lipase, glicogênio hepático, creatinina, LDH, ALT e AST) e histológicos.

Em ratas portadoras de osteoporose induzida por ovariectomia (deficiência de estrogênio), tratadas com o extrato vegetal associado ou não com 17β-estradiol (E2), com posterior análise de parâmetros bioquímicos (cálcio, fósforo, hormônio paratireoidiano e estradiol), expressão de biomarcadores ósseo (CTX-1, P1NP, RANKL, fosfatase alcalina óssea e osteocalcina), histopatológicos e imuno-histoquímicos (TNF-α).

Determinar a atividade antioxidante através da capacidade de eliminação dos radicais DPPH, NO e O₂, redução do íon férrico (FRAP), capacidade de absorção de radicais oxigênio (ORAC) e inibição da atividade da enzima xantina oxidase (XO).

Determinar a atividade inibitória das enzimas α-glicosidase, α-amilase e lipase pancreática.

Em homogenato do tecido cerebral (enzima independente) e microssomas hepáticos (enzima dependente) isolados de ratos incubados com os extratos vegetais, com posterior análise do nível de peroxidação lipídica.

Em ratos portadores de intoxicação por cloreto de cádmio (CdCl₂), tratados com o extrato vegetal, com posterior análise de parâmetros bioquímicos (ALT, AST, Alb, PT, MDA, GPx, CAT, GSH, SOD, AFP, CEA, TNF-α, bilirrubina, creatinina, ácido úrico, ureia, óxido nítrico e perfil lipídico), histológicos (renais e hepáticos), expressão de GSH, GPx, SOD, CAT, Bax, Bcl-2 e fragmentação do DNA em homogenato hepático. 

Determinar a atividade antioxidante através da capacidade redutora (FeCl₃), quelante (Fe²⁺) e de degradação da desoxirribose (Reação de Fenton).

Em homogenato de tecido cerebral e hepático de ratos incubado com o extrato vegetal e agentes oxidativos (NPS e FeSO₄), com posterior análise dos níveis de MDA e vitamina C.

Em ratos Sprague-Dawley expostos ao ácido tricloroacético (ATC) e tratados com os extratos vegetais, com posterior análise de parâmetros bioquímicos em eritrócitos e tecidos (GSH, GR, GST, CAT, SOD e MDA) e níveis enzimáticos (AST, ALT, CPK, LDH, ACP e ALP).

Em camundongos (C57BL/6) portadores de obesidade e diabetes induzidos por dieta hipercalórica, tratados com o extrato vegetal, associado com metformina ou exercício físico, com posterior análise de parâmetros bioquímicos (glicose e insulina) e moleculares (Ppargc1α, Tfam, Glut4, Cpt2, Ndufa2, mt-Nd1, mt-Nd5, Cox5a, Cox8b, mt-Co1, mt-Co2 e Atp5a) no tecido muscular gastrocnêmio.

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação do radical DPPH e redução do íon férrico (FRAP).

Em cultura de células de gliobastoma humano (42-GMBA) e de neurônios corticais incubadas com o extrato vegetal, com posterior análise de citotoxicidade (MTT).

Em células de adenocarcinoma epitelial colorretal humana (Caco-2) incubadas com os extratos vegetais e peróxido de hidrogênio (H₂O₂), com posterior análise da integridade da membrana celular (ensaio da liberação da desidrogenase lactato), da viabilidade celular (ensaio de absorção de vermelho neutro), determinar a atividade antioxidante (GSH, CAT e SOD) e citotoxicidade (ensaio do Cometa).

Determinar a atividade antioxidante através dos ensaios: DPPH, ABTS e branqueamento com β-caroteno/ácido linoleico.

Em ratos Sprague-Dawley submetidos a expansão e retenção pré-maxilar, tratados com o extrato vegetal, com posterior análise de parâmetros histológicos, histomorfométricos (neoformação óssea, número de capilares e células inflamatórias) e imuno-histoquímicos (osteoblastos e osteoclastos).

Em ratos Wistar portadores de lesões hepáticas induzidas por azatioprina, pré-tratados com os extratos vegetais, com posterior análise de parâmetros bioquímicos plasmáticos e em homogenato hepático (ALT, AST, GSH, SOD, CAT e MDA) e histopatológicos.

Em hepatócitos isolados de ratos Wistar (suplementados com o extrato vegetal) incubados com um agente oxidante (t-BHP), com posterior análise dos níveis celulares de GR, GST, LDH, MDA, GSH, GSSG e proteínas.

Em camundongos (Balb/c) suplementados com o extrato vegetal, com posterior análise do peso corporal, ingestão de alimentos, parâmetros bioquímicos plasmáticos e hepáticos (ALT e AST).

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação dos radicais NO, OH e da peroxidação lipídica.

Em camundongos portadores de hiperlipidemia induzida por dieta hipercalórica, tratados com o óleo vegetal, com posterior análise de parâmetros bioquímicos plasmáticos (GGT, AST, ALT, LDH, ALP, CPK, CT, LT, HDL, LDL, TG, VLDL, bilirrubina, creatinina e ureia) e em homogenato hepático e renal (proteínas, TBARS, PCO, SOD, CAT e GPx), índices aterogênico e da artéria coronária, níveis de lipídeos fecais e análises histológicas.

Determinar as atividades inibitória da enzima acetilcolinesterase (AChE) e antioxidante (DPPH, CAT e TDHC).

Em coelhos Wistar portadores de lesões renais induzidas por metotrexato, tratados com as nanopartículas contendo o extrato vegetal, com posterior análise de parâmetros bioquímicos (MDA, GSH, creatinina, nitrogênio ureico e ácido úrico).

Determinar a atividade inibitória das enzimas acetilcolinesterase (AChE) e butirilcolinesterase (BChE).

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação dos radicais DPPH e ABTS, capacidade de redução do íon férrico (FRAP) e teste de branqueamento com β-caroteno.

Em cultura de células humanas de melanoma amelanótico (C32), de adenocarcinoma renal (ACHN), de carcinoma hormônio dependente da próstata (LNCaP) e de câncer de mama (MCF-7) incubadas com os óleos vegetais, com posterior análise da proliferação celular (Sulforodamina B).

Em cultura de células humanas de carcinoma hepatocelular (HepG2) e normais hepáticas (WRL-68), incubadas com os extratos vegetais, com posterior análise de citotoxicidade (MTS), integridade da membrana (LDH), nível de ATP, apoptose (citometria de fluxo) e parâmetros morfológicos (microscopia invertida).

Em cultura de células de carcinoma colorretal (HCT15 e CO115) incubados com os extratos vegetais, com posterior análise da proliferação celular (MTT) e apoptose (TUNEL) e expressão de proteínas (Western blotting).

Em ratas Wistar portadoras de Síndrome do Ovário Policístico (SOP) induzido por enantato de testosterona, tratados com o extrato vegetal, com posterior análise de parâmetros bioquímicos (capacidade antioxidante total, glicose, insulina, índice aterogênico, MDA, HDL, CT, LDL, VLDL e TG).

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação do radical DPPH.

Em ratos Wistar portadores de feridas por excisão (4 cm² de espessura), tratados topicamente com a nanoemulsão contendo o óleo vegetal, com posterior análise de parâmetros biofísicos (proteína total, índice de hidroxiprolina, ácido urônico e hexosamina), expressão de citocinas pró-inflamatórias (TNF-α), ação antioxidante (radical DPPH) e antibacteriana (Sthaphylococcus aureus e Pseudomonas aeruginosa) em homogenato do tecido da ferida.

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação do radical DPPH.

Determinar a atividade inibitória das enzimas hialuronidase, colagenase e elastase.

Em camundongos Swiss submetidos a radiação cutânea (UV), pré-tratados topicamente com o extrato vegetal, com posterior análise do envelhecimento cutâneo (pontuação e medição de rugas).

Em espermatozoides isolados do sêmen de 22 voluntários normais, incubados com os óleos vegetais, com posterior análise de parâmetros fisiológicos (mobilidade e viabilidade) em câmara Makler e coloração de eosina a 2%.

Determinar a atividade da enzima H⁺,K⁺-ATPase e atividade antioxidante (DPPH, GSH, GST, CAT e SOD).

Em ratos Wistar tratados com o extrato vegetal, submetidos aos testes de lesões agudas e úlceras crônicas gástricas, induzidas por etanol a 80% e ácido acético, respectivamente, análise do volume de ácido gástrico por ligadura do piloro.

Em cultura de células humanas de adenocarcinoma da mama (MCF-7), carcinoma cervical (HeLa), carcinoma hepatocelular (HepG-2) e fibroblastos pulmonares normais (MRC-5) incubadas com o óleo vegetal, com posterior análise da proliferação celular (MTT). 

Em cultura de células HepG-2 incubadas com acetaminofeno, pré-tratadas com o óleo vegetal, com posterior análise de citotoxicidade (MTT), capacidade antioxidante total (TAOxC) e peroxidação lipídica (MDA).

Em ratos Wistar portadores de hepatotoxicidade induzida por acetaminofeno, tratados com o extrato vegetal, com posterior análise de parâmetros bioquímicos (ALP, AST, ALT, TG, CT, proteínas, ureia e creatinina).

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação do radical DPPH.

Em fígado isolados de ratos Wistar expostos a solução hipotérmica para indução de isquemia, incubados com o extrato vegetal, com posterior análise da atividade de enzimas hepáticas (ASTA e ALAT), parâmetros oxidativos (SOD, CAT, GthS e TBARS) e histológicos.

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação do radical DPPH.

Em camundongos Swiss portadores de lesões hepáticas induzidas por tetracloreto de carbono (CCl₄), pré-tratados com o extrato vegetal, com posterior análise de parâmetros bioquímicos renais e hepáticos (ALT, AST, ALP, LDH, GGT, MDA, GST, proteína total, albumina, globulina, protrombina, bilirrubina, creatinina e ureia), histológicos e danos ao DNA de células hepáticas (Ensaio do Cometa).

Em camundongos C57BL/6 portadores de diabetes (tipo 2) induzido por dieta hipercalórica, tratados com o fitoterápico, associado com atividade física ou metformina, com posterior análise de parâmetros bioquímicos (glicose, insulina, espécies reativas ao oxigênio e capacidade antioxidante total), histológicos e expressão de genes citoprotetores (Nrf2, GLUT4, Keap1, Gpx1, Txn, Nqo1 e HO1).

Determinar a atividade inibitória da enzima α-amilase e α-glicosidase.

Em eritrócitos normais de humanos incubados com o extrato e frações vegetais, com posterior análise da taxa de hemólise.

Em ratos Wistar portadores de diabetes induzido por estreptozotocina, tratados com o extrato e óleo vegetal, com posterior análise de parâmetros bioquímicos (glicose e insulina).

Em ratos Wistar portadores de diabetes induzido por estreptozocina, tratados com o extrato vegetal, com posterior análise de parâmetros de aprendizagem (evitação passiva), e bioquímicos (glicose, MDA, SOD e CAT).

Determinar a atividade antioxidante através dos ensaios: DPPH, NO, redução e atividade quelante de ferro, e peroxidação lipídica (cérebro bovino).

Determinar a atividade inibitória das enzimas acetilcolinesterase e α-glicosidase.

Em camundongos Swiss imunizados com glóbulos vermelhos de ovelhas (SRBCs), imunossuprimidos ou não com ciclofosfamida, tratados com os óleos vegetais, com posterior análise da contagem de glóbulos brancos, resposta humoral de anticorpos e resposta de hipersensibilidade (tipo retardada).

Determinar a atividade inibitória da enzima acetilcolinesterase (Método Colorimétrico de Ellman).

Em eritrócitos humanos incubados com o extrato vegetal para determinar a atividade inibitória das enzimas acetilcolinesterase (AChE) e butirilcolinesterase (BuChE).

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação dos radicais DPPH e H₂O₂.

Em ratos Wistar portadores de lesões renais induzidas por metavanadato de amônio (NH₄VO₃), tratados com o óleo vegetal, com posterior análise de parâmetros bioquímicos (LDH, ALP, TBARS, SOD, CAT, GPX, proteínas, ácido úrico, ureia, nitrogênio ureico e creatinina) e histopatológicos.

Em ratos Wistar submetidos a administração intraperitoneal do extrato vegetal e intracerebroventricular de pilocarpina (agonista muscarínico), escopolamina (antagonista muscarínico), nicotina (agonista nicotínico) e mecamilamina (antagonista nicotínico), para analisar a aprendizagem através do teste de evitação passiva (antes e pós-tratamento).

Determinar a atividade antioxidante através da eliminação do radical DPPH.

Em cultura de células Leydig TM3 normais, isoladas do testículo de camundongos, incubadas com o extrato vegetal, com posterior análise da viabilidade celular (MTT), integridade da membrana celular (CFDA-AM), níveis de testosterona, progesterona (ELISA) e radicais superóxido (NBT).

Em ratas (Fischer 344) portadoras de câncer de cólon induzido por azoximetano, tratadas com o extrato vegetal, com posterior análise da presença de foco de criptas aberrantes (identificação, quantificação e parâmetros imuno-histoquímicos), atividade do citocromo P450 2E1 e expressão da proteína 2E1 do citocromo P450 em frações hepáticas microssomais, níveis de GSH em homogenato hepático, danos ao DNA de colonócitos e linfócitos (Teste do Cometa).

Em camundongos saudáveis (C57Bl/6J) submetidos a administração aguda e crônica dos extratos e óleo vegetal, com posterior análise das funções cognitivas (labirinto em Y e labirinto aquático de Morris), parâmetros bioquímicos e histológicos (MDA e SOD), e imuno-histoquímicos (neurogenese, expressão de c-Fos, BDNF, TrkB, GR, P-GR e CaMKII).